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DNA甲基化與癌癥之NGS檢測(cè)篇

摘 要

DNA甲基化是哺乳動(dòng)物中研究最為深入的表觀遺傳修飾之一。正常細(xì)胞中,DNA 甲基化有效的調(diào)控基因表達(dá)水平。某些抑癌基因的失活是由于啟動(dòng)子區(qū)域的高甲基化,大量實(shí)驗(yàn)研究表明,在多種類(lèi)型癌癥中,DNA甲基化導(dǎo)致了大范圍的基因沉默。除了啟動(dòng)子區(qū)域和DNA重復(fù)序列中的甲基化水平改變外,甲基化還與非編碼RNA(如腫瘤抑制作用相關(guān)的microRNA)的表達(dá)調(diào)控有關(guān)。

DNA甲基化水平與腫瘤發(fā)生發(fā)展過(guò)程的聯(lián)系,鼓勵(lì)著我們不斷的解碼人類(lèi)表觀基因組。甲基化測(cè)序是研究不同生命過(guò)程中基因調(diào)控的一個(gè)重要工具,例如細(xì)胞分化和疾病進(jìn)展,并且越來(lái)越多的應(yīng)用到包括腫瘤早篩、診斷等臨床檢測(cè)中。全基因組甲基化測(cè)序(WGBS)允許無(wú)偏好性的進(jìn)行單堿基分辨率檢測(cè),是理想的檢測(cè)目標(biāo)區(qū)域方法。當(dāng)您想進(jìn)一步研究感興趣的目標(biāo)基因組區(qū)域,經(jīng)過(guò)雜交捕獲后再測(cè)序,這種有針對(duì)性的甲基化測(cè)序檢測(cè)方案成本更低。特別地,在評(píng)估具有低水平甲基化特征的復(fù)雜樣本時(shí)(如液體活檢中的游離DNA),一般需比常規(guī)全基因組甲基化測(cè)序達(dá)到更高的測(cè)序深度,雜交捕獲成為理想的實(shí)驗(yàn)方案。

什么是甲基化


在哺乳動(dòng)物細(xì)胞中,DNA甲基化的特征是在DNA甲基轉(zhuǎn)移酶(DNMT)的作用下,胞嘧啶嘧啶環(huán)(5-甲基胞嘧啶;5mC)第5位碳原子上添加上甲基基團(tuán)(-CH3),并且甲基的共價(jià)加成通常發(fā)生在CpG二核苷酸中的胞嘧啶中(見(jiàn)下圖[1]),該二核苷酸集中在稱(chēng)為CpG島中,CpG位點(diǎn)成簇的以預(yù)期頻率出現(xiàn)。在人類(lèi)基因組中,約有2800萬(wàn)個(gè)CpG位點(diǎn),約70%的正常體細(xì)胞中為甲基化,并且,這些CpG位點(diǎn)的分布并不均勻。大多數(shù)CpG島的長(zhǎng)度為500-1000個(gè)堿基對(duì)(bp),他們通??缭絾?dòng)子區(qū)域,特別是管家基因。與大部分基因組不同,位于CpG島內(nèi)的CpG位點(diǎn)通常在正常體細(xì)胞中為未甲基化狀態(tài)。

在哺乳動(dòng)物中,負(fù)責(zé)5-甲基胞嘧啶(5mC)形成的DNA甲基轉(zhuǎn)移酶包括DNMT1,DNMT3A及DNMT3B。DNMT1酶可以識(shí)別半甲基化的DNA,并保證維持現(xiàn)有的甲基化模式;DNMT3A和DNMT3B會(huì)在未甲基化的胞嘧啶上添加甲基基團(tuán)。除了5-甲基胞嘧啶(5mC),5-羥甲基胞嘧啶(5hmc)為已發(fā)現(xiàn)胞嘧啶的甲基化中間產(chǎn)物,與5-甲基胞嘧啶(5mC)都為哺乳動(dòng)物基因組中發(fā)現(xiàn)的兩種最常見(jiàn)的表觀遺傳標(biāo)記,通過(guò)雙加氧酶家族TET(包括TET1、TET2和TET3)蛋白,將5-甲基胞嘧啶(5mC)氧化為5-羥甲基胞嘧啶(5hmc)[2]。DNA的5-甲基胞嘧啶(5mC)和5-羥甲基胞嘧啶(5hmc)水平,在腫瘤發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮了重要的作用。

甲基化與癌癥


DNA甲基化對(duì)于發(fā)育以及維持細(xì)胞正常功能至關(guān)重要,腫瘤細(xì)胞中甲基化特征與正常細(xì)胞大有不同,并且,在癌癥患者中可以同時(shí)檢測(cè)到低甲基化和高甲基化水平的改變。在腫瘤的發(fā)生的初始及進(jìn)展階段,表觀水平就已經(jīng)出現(xiàn)了異常,DNA甲基化整體上發(fā)生了改變。一般而言,CpG區(qū)域的甲基化水平總體下降,可導(dǎo)致基因組的不穩(wěn)定性,但較少地激活沉默的原癌基因[1]。

癌癥的發(fā)生、發(fā)展伴隨著DNA甲基化模式的改變,包括了逆轉(zhuǎn)錄元件、著絲粒及原癌基因的DNA低甲基化,以及與基因抑制相關(guān)的關(guān)鍵基因調(diào)控元件(如遠(yuǎn)端增強(qiáng)子和啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄起始的重疊區(qū)域)的甲基化。如下圖所示,在整個(gè)基因組的所有基因調(diào)控元件,正常細(xì)胞和癌癥細(xì)胞之間的DNA甲基化模式存在廣泛差異。正常基因組中的大部分CpG位點(diǎn)都攜帶著5mC,而遠(yuǎn)端增強(qiáng)子元件及CpG島區(qū)域?qū)谆D(zhuǎn)移酶DNMT的活性具有抗性。癌細(xì)胞主要表現(xiàn)特征為整體范圍的失去甲基化遺傳學(xué)修飾,反而增強(qiáng)子和啟動(dòng)子區(qū)域內(nèi)出現(xiàn)異常的甲基化位點(diǎn)。這種甲基化分布的改變,導(dǎo)致了腫瘤抑癌基因的表達(dá)受抑制,并伴隨著原癌基因表達(dá)的增加,從而進(jìn)一步推動(dòng)了腫瘤的發(fā)生、發(fā)展。(在下圖中,白色圓圈代表未甲基化CpG位點(diǎn);黑色圓圈代表甲基化CpG位點(diǎn)[1])。


DNA甲基化為常見(jiàn)的腫瘤標(biāo)志物


二十多年前,盧煜明教授等人已經(jīng)證明了利用DNA甲基化作為生物標(biāo)記物檢測(cè)孕婦/癌癥患者血漿中胎兒/腫瘤源性DNA的可行性[3,4]。研究表明,在妊娠和癌癥模型中,cfDNA與其組織來(lái)源的基因組DNA之間的DNA甲基化特征高度一致。DNA甲基化在同一個(gè)體具有高度的組織特異性,同時(shí),不同個(gè)體的相同組織,其甲基化水平可能也具有著一致性[5]??蓪⑦@一概念應(yīng)用于分析血漿樣本中的DNA甲基化水平,就可以推測(cè)cfDNA的組織起源。與檢測(cè)遺傳水平突變相比,表觀遺傳修飾在不同癌癥種類(lèi)中具有更高的一致性。在臨床實(shí)踐中,可以從實(shí)體瘤或癌癥患者的血漿DNA中挖掘出具有臨床價(jià)值的DNA甲基化生物標(biāo)記物。Wanxia Gai等人總結(jié)了近些年利用此類(lèi)DNA生物標(biāo)記物進(jìn)行癌癥檢測(cè)的研究(見(jiàn)下表) [2]。

甲基化檢測(cè)應(yīng)用


提到甲基化在癌癥領(lǐng)域的應(yīng)用,最值得分享的便是長(zhǎng)期專(zhuān)注于癌癥早診早篩的醫(yī)療公司GRAIL及將MRD用于早期結(jié)直腸癌患者的檢測(cè)和復(fù)發(fā)監(jiān)測(cè)的Guardant Health(GH)。

2020年6月,GRAIL在歐洲腫瘤學(xué)會(huì)(ESMO)旗下期刊《腫瘤學(xué)年鑒》(Annals of Oncology)發(fā)表了CCGA(Circulating Cell-free Genome Atlas,CCGA)的三個(gè)子項(xiàng)目實(shí)驗(yàn)結(jié)果。在CCGA1的原理發(fā)現(xiàn)階段,使用訓(xùn)練集樣本1785例及驗(yàn)證集樣本1015例,同時(shí)對(duì)三種不同的高通量測(cè)序(NGS)方案進(jìn)行評(píng)估,包括了靶向測(cè)序、全基因組測(cè)序(拷貝數(shù)變異,CNV)及全基因組亞硫酸氫鹽測(cè)序 (WGBS)。驗(yàn)證結(jié)果證明, 相比于DNA突變水平檢測(cè),WGBS技術(shù)路線更適合應(yīng)用于癌癥早篩的研究領(lǐng)域[6]。GRAIL也同時(shí)公布了其結(jié)合機(jī)器學(xué)習(xí)算法的cfDNA的甲基化測(cè)序分析技術(shù)可以同時(shí)檢測(cè)五十多種癌癥類(lèi)型,其檢測(cè)的特異性>99%,并且對(duì)腫瘤信號(hào)組織來(lái)源的預(yù)測(cè)準(zhǔn)確性>90%[6]。由于CCGA是一項(xiàng)病例對(duì)照研究,可能無(wú)法真實(shí)的反映該血液檢測(cè)在普通人群篩查情況下的表現(xiàn)。目前,研究團(tuán)隊(duì)仍在持續(xù)進(jìn)行PATHFINDER實(shí)驗(yàn),通過(guò)納入更多的健康人群,以評(píng)估檢測(cè)方案在臨床護(hù)理環(huán)境中的實(shí)施及性能。

甲基化應(yīng)用的另一個(gè)方向?yàn)镸RD(Minimal Residual Disease),即微小殘留病灶(是指癌癥治療后殘留在體內(nèi)的少量癌細(xì)胞(對(duì)治療無(wú)反應(yīng)或耐藥的癌細(xì)胞))。2021年4月,《臨床腫瘤研究》(Clinical Cancer Research)在線發(fā)表了名為《Minimal Residual Disease Detection using a Plasma-only Circulating Tumor DNA Assay in Patients with Colorectal Cancer》文章,Guardant Reveal首次公開(kāi)了僅使用血漿ctDNA MRD的檢測(cè)數(shù)據(jù),證明MRD檢測(cè)靈敏度達(dá)到91%,特異性達(dá)100%。Guardant Reveal的MRD技術(shù)路線是Tumor-agnostic策略,又稱(chēng)為T(mén)umor-uninformed,即僅依賴(lài)于血漿ctDNA進(jìn)行MRD檢測(cè)(無(wú)需組織活檢),檢測(cè)方案為整合ctDNA突變(LOD為0.01%ctDNA)及ctDNA甲基化水平檢測(cè)(見(jiàn)下圖)。該研究表明,通過(guò)整合表觀基因組標(biāo)記,如DNA甲基化分析,比單獨(dú)基因組水平突變檢測(cè)靈敏度更高[7]


甲基化檢測(cè)之NGS方法及流程


隨著高通量測(cè)序技術(shù)的發(fā)展,NGS(Next-generation sequencing)也成為一種可快速獲得任何物種DNA甲基化圖譜的檢測(cè)方法。除了選擇全因組范圍內(nèi)的甲基化水平檢測(cè)外,還可以進(jìn)行DNA富集后再測(cè)序,如MeDIP或MBD Cap(也稱(chēng)為MeDIP-seq或MBD-Cap-seq)。甲基化DNA片段被特定的抗體或蛋白質(zhì)捕獲 ,經(jīng)過(guò)純化、擴(kuò)增等步驟后測(cè)序。但該種檢測(cè)方案不能準(zhǔn)確的識(shí)別單個(gè)位點(diǎn)的甲基化水平,常用于評(píng)估特定區(qū)域的甲基化水平。與之類(lèi)似的為基于限制內(nèi)切酶的前處理方案,稱(chēng)之為MSRE(MSRE-seq),使用甲基化位點(diǎn)敏感的限制性?xún)?nèi)切酶(BstUI、HpaII、NotI和SmaI),針對(duì)非甲基化限制位點(diǎn)進(jìn)行切割,同樣經(jīng)過(guò)純化、擴(kuò)增等步驟后測(cè)序。由于以上兩種方法都具有較低的檢測(cè)分辨率和基因組覆蓋率,也就限制了在腫瘤領(lǐng)域,特別是癌癥早篩、早診的臨床應(yīng)用[8]

重亞硫酸氫鹽處理一直是繪制DNA甲基化圖譜的金標(biāo)準(zhǔn),由來(lái)自澳大利亞的Kanematsu等科學(xué)家開(kāi)發(fā)的技術(shù)方案[10,11],DNA經(jīng)重亞硫酸氫鹽處理后,其胞嘧啶殘基轉(zhuǎn)化為尿嘧啶殘基,5-甲基胞嘧啶(5mC)則保持不變,各檢測(cè)方案對(duì)比見(jiàn)下表[9]

如果想針對(duì)大量樣本的特定區(qū)域進(jìn)行甲基化檢測(cè)時(shí),WGBS無(wú)疑成為一個(gè)成本相對(duì)較高的技術(shù)方案。幸運(yùn)地是,雜交捕獲技術(shù)可以在一次反應(yīng)中檢測(cè)成千至上百萬(wàn)個(gè)目標(biāo)基因組序列堿基,為此提供了一種性?xún)r(jià)比極高的解決方案,在成本允許的情況下可以實(shí)現(xiàn)更高的測(cè)序深度和更大規(guī)模的研究。
常規(guī)甲基化文庫(kù)制備方法為下圖中流程B所示,DNA在連接反應(yīng)步驟中加入測(cè)序接頭,轉(zhuǎn)化成可以上機(jī)測(cè)序的文庫(kù)后進(jìn)行重鹽硫酸鹽處理,也稱(chēng)作PreBS(Pre-Bisulfite)方法。該方案通常需至少微克量級(jí)別DNA,其主要原因是亞硫酸氫處理會(huì)破壞DNA雙鏈結(jié)構(gòu),導(dǎo)致測(cè)序時(shí)損傷的文庫(kù)無(wú)法進(jìn)行簇生成。文庫(kù)序列信息或獨(dú)特分子的大量丟失,限制了供人類(lèi)疾病研究的樣品類(lèi)型,如游離核酸。即使低起始量DNA樣本最終轉(zhuǎn)化成可以上機(jī)的測(cè)序文庫(kù),但由于重鹽硫酸鹽處理而導(dǎo)致極低的文庫(kù)分子復(fù)雜度,影響了最終的測(cè)序質(zhì)量,如產(chǎn)生較高的dup率。
為了解決上述遇到的難題,重亞硫酸氫鹽處理后進(jìn)行建庫(kù)的技術(shù)方案逐漸成為主流的檢測(cè)路線,即PostBS (Post-Bisulfite),PBAT(Post Bisulfite Adapter Tagging)也屬于該方法之一(流程C)。PBAT是以重亞硫酸氫鹽轉(zhuǎn)化后的單鏈DNA為初始模板,通過(guò)兩輪隨機(jī)引物延伸,從而連接兩端測(cè)序接頭。由于隨機(jī)引物的使用,使得:

1

重亞硫酸鹽處理后所產(chǎn)生的損傷DNA模版, 其中有一定的比例無(wú)法結(jié)合引物,從而降低了測(cè)序文庫(kù)的分子復(fù)雜度;

2

隨機(jī)擴(kuò)增有著模版偏好性。

值得注意的是,PBAT方案的改良版本也一直用于單細(xì)胞甲基化分析方案中。

Swift Biosciences(IDT埃德特公司收購(gòu))創(chuàng)立了更加優(yōu)化的建庫(kù)PostBS流程,與PBAT相同,都以重亞硫酸氫鹽轉(zhuǎn)化后的單鏈DNA為初始模板;不同的是,IDT xGen? Methyl-Seq Library Prep(原來(lái)名稱(chēng)Accel-NGS Methyl-Seq Library Kit,Adaptase技術(shù))對(duì)重亞硫酸氫鹽轉(zhuǎn)化處理后的單鏈及損傷DNA進(jìn)行最大程度地利用和轉(zhuǎn)化,從而提供更完整、偏好性更低的甲基化文庫(kù)(流程A)。
IDT xGen? Methyl-Seq Library Prep基于Adaptase?專(zhuān)利技術(shù),該技術(shù)是一種高效的、不依賴(lài)于模板的單鏈DNA接頭連接方法。該建庫(kù)試劑盒提高了文庫(kù)轉(zhuǎn)變效率,允許將重亞硫酸氫鹽轉(zhuǎn)化處理后的DNA樣品連接測(cè)序接頭,對(duì)樣本組成實(shí)現(xiàn)精準(zhǔn)呈現(xiàn)。通過(guò)高效率的接頭連接方式,對(duì)重亞硫酸氫鹽轉(zhuǎn)化處理后的單鏈及損傷 DNA 進(jìn)行文庫(kù)構(gòu)建,相比構(gòu)建文庫(kù)后再做亞硫酸氫鹽轉(zhuǎn)化處理的方法,文庫(kù)產(chǎn)量可提升100倍;除此之外,使用IDT特有的、無(wú)偏好性的接頭連接方式,經(jīng)全基因組亞硫酸氫鹽測(cè)序(WGBS)驗(yàn)證,xGen? Methyl-Seq Library Prep甲基化建庫(kù)試劑盒可提供更完整、更偏好性更低的NGS文庫(kù)。
來(lái)自新加坡南洋理工大學(xué)Li Zhou等人在Illumina NovaSeq和HiSeqX測(cè)序平臺(tái)上,系統(tǒng)的比較了三種PostBS文庫(kù)制備試劑盒性能,包括xGen? Methyl-Seq Library Prep, Illumina TruSeq DNA Methylation kit(PBAT)和QIAGEN QIAseq Methyl Library kit(PBAT)[12]。實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)如下表所示,樣本1-4及樣本5-8分別為全血和白細(xì)胞亞群(樣本5和8:CD4+T細(xì)胞;樣本6和7:中性粒細(xì)胞)
該研究團(tuán)隊(duì)評(píng)估了包括測(cè)序質(zhì)量(Q20, Q30, 低質(zhì)量堿基去除比例等)、文庫(kù)質(zhì)量(平均插入片段大小、重疊區(qū)域比例、dup率等)、覆蓋度(平均有效測(cè)序深度、覆蓋度均一性、CpG位點(diǎn)覆蓋情況)等測(cè)序指標(biāo),下方熱點(diǎn)圖綜合了三種建庫(kù)制備方法的總體性能比較結(jié)果,其中“綠色”和“紅色”分別表示性能表現(xiàn)好及差的技術(shù)方法。如某一特定指標(biāo)兩兩比較時(shí),在統(tǒng)計(jì)上沒(méi)有顯著差異,那么該兩種方法將被賦予平均表現(xiàn)的相同等級(jí),例如,在評(píng)估Q20測(cè)序指標(biāo)時(shí),IDT xGen? Methyl-Seq Library Prep和TruSeq都為最佳表現(xiàn)的試劑盒,且等級(jí)分?jǐn)?shù)相同(2.5=(2+3)/2),因?yàn)閮烧咧g沒(méi)有統(tǒng)計(jì)學(xué)上的顯著差異。

總 結(jié)


甲基化測(cè)序是研究不同生命過(guò)程中基因調(diào)控的一個(gè)重要工具,例如細(xì)胞分化和疾病進(jìn)展,并且越來(lái)越多的應(yīng)用到包括腫瘤早篩、分診、治療選擇、微小殘留監(jiān)測(cè)、復(fù)發(fā)檢測(cè)等臨床領(lǐng)域中。包括游離核酸在內(nèi)的體液樣本,含有來(lái)自于腫瘤的特異的DNA甲基化信號(hào),作為生物標(biāo)志物樣本檢測(cè)來(lái)源,無(wú)疑是一個(gè)絕佳的選擇。

重亞硫酸氫鹽處理一直是繪制DNA甲基化圖譜的金標(biāo)準(zhǔn),由于其轉(zhuǎn)化效率的穩(wěn)定性,保證了后續(xù)甲基化檢測(cè)結(jié)果的準(zhǔn)確性。在針對(duì)特定的目標(biāo)區(qū)域進(jìn)行大樣本量的檢測(cè)時(shí) ,WGBS就成為一個(gè)成本相對(duì)較高的技術(shù)方案。雜交捕獲技術(shù),搭配PostBS單鏈建庫(kù)流程,可對(duì)感興趣的目標(biāo)區(qū)域進(jìn)行精準(zhǔn)研究。

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  參考資料:

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