RT-PCR實(shí)驗(yàn)有三步：抽提RNA，RT，PCR。
要求：
1.做RT前必需測RNA濃度，逆轉(zhuǎn)錄體系對RNA量還是有一些要求，常用500ng或1ug。
2. RT按要求做，一般不會出太大問題。
3. PCR，按常規(guī)。但如需擴(kuò)長片段，則對前兩步要求較高，需要有完整的cDNA存在，不是單改變Mg2+濃度、退火溫度能解決的。
1）RT和PCR時的引物設(shè)計(jì)是不是一定要先知道目的基因的序列？必須
在RT時，引物設(shè)計(jì)有3種方法即a：Random 9mers；b：Oligo dT-Adaptor Primer；和c：特異的下游引物。如果用a和b方法，是擴(kuò)增的所有的cDNA（理論上），還要用此產(chǎn)物做PCR 的模板繼續(xù)擴(kuò)增。
如果用c方法，那么要去那里查它的序列呢？http://www.ncbi.nlm.nih.gov
問題：
在做RT-PCR遇到一怪現(xiàn)象，即對同一動物不同組織擴(kuò)增同一段基因，結(jié)果從一種組織中可以擴(kuò)出我的目的基因，條帶非常的好，而另一組織在同樣的條件下卻得到許多非特異性的條帶，嘗試其他條件同樣無法得到滿意的結(jié)果，百思不得其解！（注：已肯定該基因在兩種組織中都表達(dá)，且內(nèi)參照在兩種組織都可擴(kuò)增出來）
從這兩種組織中提取的RNA的量是不一樣的，我測過吸光度，差異還很大，會不會和這有關(guān)呢？請高手指教！
解答：
1.RT-PCR有兩種做法：
條件具備的話可用kit進(jìn)行一步法進(jìn)行；若條件不太好的話可分兩步進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄再PCR。但后來發(fā)現(xiàn)兩步法的結(jié)果更加理想，條帶特異性強(qiáng)且無拖尾現(xiàn)象，我推測是體系更加單一比較利于PCR的進(jìn)行，當(dāng)然也可能是我買的kit不太好。（promega）。
2.RT-PCR應(yīng)具備的條件
高質(zhì)量的RNA（保留后可做5‘，3’RACE）；引物的（最好產(chǎn)物短點(diǎn)）；若涉及粗略定量的話還應(yīng)考慮RNA的濃度或是cDNA的濃度（如果由內(nèi)標(biāo)分子更好，但我發(fā)現(xiàn)其實(shí)很不容易將RNA的濃度以及內(nèi)標(biāo)分子的表達(dá)量調(diào)整的完全一樣）；體系的均一性等。
3.RACE
我做過RACE（3’RACE是寶生物的Kit；5‘RACE是Gibico），但現(xiàn)在再進(jìn)行另一個同源基因的3‘RACE時卻怎么也P不出來，這兩個基因是由同一對引物擴(kuò)增出來的，其中一個已經(jīng)獲得了全序列（RACE的方法），而另一個基因的3’UTR卻增么也擴(kuò)不出來，我推測是不是該基因的3‘UTR太長的緣故，我都快綠了，有無
RT-PCR的常用內(nèi)標(biāo)b－actin 和GAPDH的使用有選擇性嗎？比如不同的細(xì)胞，不同的刺激。
有關(guān)內(nèi)參：
RT-PCR內(nèi)參照可以在一個管子里做（那樣也是圖好看一些），最好分開兩管，把除了引物之外的mixture統(tǒng)一配，拍照后，算目的基因和內(nèi)參的比值，這就是基因表達(dá)的相對濃度。
問：我曾經(jīng)作過同一管的PCR，內(nèi)有actin 和目的基因引物。雖然可見到兩條均一條帶但圖片質(zhì)量不理想（而且酶量、Mg2+加倍）。請教mxbdna2003 ，你是如何處理同一管的PCR的各成分的濃度？
答： it should determined the amount of RNA. but it not for the quantitity of the PCR. it just was convienent to guess the amount ot the template<(for RT and PCR) and bettrer for publication and editor if he don not know the preocedure much. but the amount just using "accurate piptte" is wrong. it shoud be remembered to do the inner control of housekeeping gene everytime.
在同一管中做RT，其實(shí)沒有什么問題，不需要taq魅加量，taq酶本來就是過量的^-^，（平時做pcr的時候，完全可以再省一些taq酶的，半斤八兩就可以了，我想這肯定再很多貼子里應(yīng)該都談到了。Mg就跟不能變了，一變整個體系就變了。能看到均一條帶就很好了。
關(guān)鍵是摸，十八摸（太少，只爭朝夕，開個玩笑）雖然用不著，但是摸上3、5摸總是必要的，首先要分開摸，然后再一起摸，直到摸的好了，還要考慮比較的不同的模板中的量，所以我們不建議再同一管中進(jìn)行，因?yàn)檫€有互相競爭抑制的問題，即使不同基因之間。
有關(guān)內(nèi)參的建議：
一定要做內(nèi)參的，每一次，我想。不作內(nèi)參的結(jié)果是不可信的
電泳可以不一起跑，沒有關(guān)系，計(jì)算的是相對表達(dá)程度，著我在好幾封帖子里都談了，再說一邊我得觀點(diǎn)，1、半定量和定量RT-PCR做的都是基因相對表達(dá)量，不是絕對表達(dá)量，除非你能準(zhǔn)確知道來自多少細(xì)胞，但是細(xì)胞還有死的呢。2、以電泳為基礎(chǔ)的半定量RT-PCR本身是不可信的，作為實(shí)驗(yàn)的粗篩是可以的，但不能作為最終結(jié)果的，3、半定量RT-PCR應(yīng)該再兩管中進(jìn)行，除非內(nèi)參基因和目的基因表達(dá)相同，長度差不多，GC含量相似，或者實(shí)在窮的要省PCR管和taq。
關(guān)于平臺期和線性期的問題，實(shí)際上線性期是指數(shù)期，只不過碰巧2的冥和2的倍數(shù)是相同的?？瓷先ト魏我粋€時期都可以，實(shí)際上是不對的，因?yàn)闋可娴矫复賱恿W(xué)的問題，這個我也不懂，有一些專門的文章，好像，涉及到很多化學(xué)的東西。我們學(xué)醫(yī)的，也沒必要知道那些，但是其中主要是因?yàn)槟０逡锩冈虾蚥uffer之間的關(guān)系，這種反應(yīng)單靠改變其中一種成分沒有用的，酶一直是過量，再加酶也沒用，引物ntp都是這樣。煙鬼正傳，最好選線性期的開始階段，但是要在你的凝膠成像分辨范圍內(nèi)，所以選一個這兩種的契合點(diǎn)。給你一張圖你就明白了，再開始的時候酸的是切線，關(guān)于引物設(shè)計(jì)，再可能的情況下，除了常規(guī)要求之外，最好兼顧跨內(nèi)含子（不過，根據(jù)要求，還可以專門設(shè)計(jì)隔內(nèi)含子的，這樣還可以用于基因組（CR）、長度小于500bp－600bp等等。
引物當(dāng)然要設(shè)計(jì)成一樣的退火溫度，即使不在一管中，也要一樣的，要在一臺機(jī)器里啊。我的引物占了冰箱一格，大部分是一個溫度，這樣任何幾個都可以拿來披，也不用查。
我反復(fù)說過了，別用軟件，就用眼睛看，軟件涉及的在好，有些基因在它出軟件的時候，還沒發(fā)現(xiàn)呢，跟不要說在基因組的位置和序列了，怎么考慮內(nèi)含子的問題呢？
18s的引物也和著名的βactin一樣是設(shè)計(jì)的，只要拿到序列就可以了，但是限制是只能用總RNA為模板，但是比actin和bubulin等可準(zhǔn)多了，更不要說GAPDH這個破爛了。18s除了在細(xì)胞中更相同（量）外，主要是它占的比例遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于看家基因，所以定量更加準(zhǔn)確，我想，不知對不對，請幾位主任和eeflying指教。我認(rèn)為，就像你用某一種東西的數(shù)量去概括，因該選那種多的東西，說一座房子是由2000塊磚造成的，比說又29根梁更準(zhǔn)確吧。更不要說沒有看家基因不看家的缺點(diǎn)，因?yàn)樗欠?wù)于整個基因組表達(dá)譜什么的。
PE有專門的用于實(shí)時PCR的內(nèi)參試劑盒，就是用18s，不過我們看懂使用的那條序列，不知有沒有人用過，告知其序列和genbank號。
我覺得做RT-PCR的方法和條件及應(yīng)注意的事項(xiàng)就是那么幾條,許多專業(yè)書都有詳細(xì)的描述,但是許多人還是歷經(jīng)多次磨難，有時就是得不出結(jié)果。因此，我認(rèn)為因?yàn)槊總€人所要克隆的片斷不同，引物不同等，因此對不同的人來說還是有他自己的特殊性,我的以下經(jīng)歷說明：做實(shí)驗(yàn)時各人的情況不同,做不出時還是要好好動一下腦子。
記得我開始我的ＲＴ－PCR時，按常規(guī)方法，提取總ＲＮＡ后，首先用自己設(shè)計(jì)的下游引物進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄，不斷改變反應(yīng)條件，進(jìn)行了Ｎ次均沒有結(jié)果。后來考慮到本人的克隆的PCR的片斷位于我們實(shí)驗(yàn)另一位同學(xué)克隆的片斷當(dāng)中，而該同學(xué)已經(jīng)用RT-PCR克隆出她的片斷（盡管她用這些ＲＴ－ＰＣＲ產(chǎn)物做模版再進(jìn)行ＰＣＲ時也沒辦法重復(fù)出她的產(chǎn)物），因此，我先用她的引物和條件擴(kuò)增出她的片斷，然后用她的ＲＴ－ＰＣＲ產(chǎn)物作模板（有點(diǎn)改進(jìn)，逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)換用了９mers隨機(jī)引物），用我的引進(jìn)物進(jìn)行一般PCR，終于得到我的產(chǎn)物，測序結(jié)果完全正確。盡管我的這個經(jīng)歷別人很人遇到，但足可以說明實(shí)驗(yàn)可以有自己的模式，書本的知識和別人的經(jīng)驗(yàn)很重要，但有時也不定要受到書本框框和別人經(jīng)驗(yàn)的限制
請問：
1 引物的特異退火溫度怎樣設(shè)定？可以根據(jù)gc 和at含量算出嗎？可以用引物報告單上的Tm值嗎？
2 PCR時20微升體系中cDNA應(yīng)加多少比較合適？MgCl2應(yīng)加多少？各個成分的量有無確定標(biāo)準(zhǔn)？
3 PCR結(jié)果跑電泳，actin有，但跑不出目的條帶，有幾種原因？與cDNA的量少有關(guān)嗎？Mg離子太多是否會抑制Taqase的活性？
一般來說引物報告單上的是對的,也可以自己算,實(shí)際上重要的各條引物一致,剩下的可以摸的.
20中是指體積還是量?只要不明顯改變體系的離子強(qiáng)度,加1,2ul都可以的.mg要調(diào)的,但我總覺得沒有書里講的那么玄乎,我都是常年不變的.
如果內(nèi)參照有,目的沒有,至少證明不是"美麗惹"的禍.原因書里應(yīng)該都說了.
一、 防止RNA酶污染的措施
1. 所有的玻璃器皿均應(yīng)在使用前于180℃的高溫下干烤6hr或更長時間。
2. 塑料器皿可用0.1% DEPC水浸泡或用氯仿沖洗（注意：有機(jī)玻璃器具因可被氯仿腐蝕，故不能使用）。
3. 有機(jī)玻璃的電泳槽等，可先用去污劑洗滌，雙蒸水沖洗，乙醇干燥，再浸泡在3% H2O2 室溫10min，然后用0.1% DEPC水沖洗，晾干。
4. 配制的溶液應(yīng)盡可能的用0.1% DEPC，在37℃處理12hr以上。然后用高壓滅菌除去殘留的DEPC。不能高壓滅菌的試劑，應(yīng)當(dāng)用DEPC處理過的無菌雙蒸水配制，然后經(jīng)0.22μm濾膜過濾除菌。
5. 操作人員戴一次性口罩、帽子、手套，實(shí)驗(yàn)過程中手套要勤換。
6. 設(shè)置RNA操作專用實(shí)驗(yàn)室，所有器械等應(yīng)為專用。
二、常用的RNA酶抑制劑
1. 焦磷酸二乙酯（DEPC）：是一種強(qiáng)烈但不徹底的RNA酶抑制劑。它通過和RNA酶的活性基團(tuán)組氨酸的咪唑環(huán)結(jié)合使蛋白質(zhì)變性，從而抑制酶的活性。
2. 異硫氰酸胍：目前被認(rèn)為是最有效的RNA酶抑制劑，它在裂解組織的同時也使RNA酶失活。它既可破壞細(xì)胞結(jié)構(gòu)使核酸從核蛋白中解離出來，又對RNA酶有強(qiáng)烈的變性作用。
3. 氧釩核糖核苷復(fù)合物：由氧化釩離子和核苷形成的復(fù)合物，它和RNA酶結(jié)合形成過渡態(tài)類物質(zhì)，幾乎能完全抑制RNA酶的活性。
4. RNA酶的蛋白抑制劑（RNasin）：從大鼠肝或人胎盤中提取得來的酸性糖蛋白。RNasin是RNA酶的一種非競爭性抑制劑，可以和多種RNA酶結(jié)合，使其失活。
5. 其它：SDS、尿素、硅藻土等對RNA酶也有一定抑制作用。
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